Sphingosin-1-phosphat

Strukturformel
Sphingosin-1-phosphat
Allgemeines
NameSphingosin-1-phosphat
Andere Namen
  • (2S,3R,4E)-2-Amino-4-octadecen-1,3-diol 1-phosphat
  • D-erythro-Sphingosine 1-phosphat
SummenformelC18H38NO5P
Externe Identifikatoren/Datenbanken
CAS-Nummer26993-30-6
EG-Nummer (Listennummer)636-659-1
ECHA-InfoCard100.164.436
PubChem5283560
ChemSpider4446673
WikidataQ418267
Eigenschaften
Molare Masse379,472 g·mol−1
Aggregatzustand

fest[1]

Sicherheitshinweise
GHS-Gefahrstoffkennzeichnung[1]
Gefahrensymbol

Achtung

H- und P-SätzeH: 315​‐​319​‐​335
P: 261​‐​305+351+338[1]
Soweit möglich und gebräuchlich, werden SI-Einheiten verwendet. Wenn nicht anders vermerkt, gelten die angegebenen Daten bei Standardbedingungen.

Sphingosin-1-phosphat, auch S1P, ist eine in Wirbeltieren, Insekten und Pflanzen vorkommende chemische Verbindung aus der Gruppe der Sphingolipide bzw. Lysophosphatide. Der Phosphorsäureester des Sphingosins ist ein Gewebshormon (Second Messenger) mit Einfluss auf das Zellwachstum, die aktive Ortsveränderung von Zellen (Zellmigration) sowie die Zelldifferenzierung. Sphingosin-1-phosphat hemmt auch die Apoptose (programmierter Zelltod).[2]

Geschichte

Die Erstbeschreibung von S1P fand im Jahr 1884 durch den deutschen Arzt Ludwig Thudichum statt. Dieser isolierte die Substanz aus dem Gehirn und benannte sie aufgrund ihrer "enigmatischen Natur" nach dem mythologischen Wesen der Sphinx.[3]

Biosynthese und Metabolismus

Die Biosynthese des Sphingosin-1-phosphats erfolgt aus dem Sphingolipid Sphingomyelin. Dieses wird durch die Sphingomyelinase unter Abspaltung eines Phosphocholinrestes zum Ceramid und weiter durch die Ceramidase zum Sphingosin hydrolysiert. Auf letzteres wird durch die Sphingosinkinase (EC 2.7.1.91) unter Verbrauch eines Moleküls ATP ein Phosphatrest auf die Hydroxygruppe übertragen und Sphingosin-1-phosphat freigesetzt.

Der Abbau erfolgt über zwei Wege: Einerseits wird im Umkehrung des letzten Syntheseschrittes S1P zu Sphingosin und Phosphat hydrolysiert, andererseits kann durch die Sphinganin-1-phosphat-Aldolase (EC 4.1.2.27, auch Sphingosin-1-phosphat-Lyase) eine Spaltung in 2-Hexadecenal und Phosphoethanolamin katalysiert werden. Eine Rolle beim Abbau spielen aber auch mehrere Phosphatidat-Phosphatasen.

Funktion

Sphingosin-1-phosphat hat als Signalmolekül vielfältige intra- wie extrazelluläre Funktionen. Besonders hervorzuheben ist seine Bedeutung für:

  • die Zellproliferation: S1P steigert die Zellproliferation und ist Schutzfaktor im Falle toxischer Ereignisse. Durch Verringerung von Sphingosin und Ceramid wirkt es anti-apoptotisch.
  • die Zellmigration: S1P bewirkt eine Verstärkung des gerichteten Wanderverhaltens einzelner Zellen
  • die Gefäßpermeabilität: Durch Aktivierung des VE-Cadherin-Systems/adherens junction und durch unbekannte Effekte auf die vesikuläre Transzytose wird die Durchlässigkeit des Endothels für große Moleküle und ggf. Zellen deutlich reduziert.
  • die Angiogenese: Viele Vorgänge der Angiogenese werden unterstützt: Induktion der endothelialen NO-Synthase (eNOS), Proliferation und Migration von Endothelzellen, Röhrenbildung, Gefäßreifung durch glatte Muskelzellen und Perizyten.
  • die Funktion von Thrombozyten: S1P wird in den Blutplättchen gebildet, gespeichert und bei Aktivierung sezerniert.
  • Stimulation der Cyclooxygenase 2 zur Produktion von PGE2.

Regulation

Vorkommen von S1P

Die Konzentration von S1P innerhalb des Körpers wird durch S1P-Kinasen und -Lyasen streng reguliert. Hohe S1P-Konzentration sind innerhalb von lymphatischen Kapillaren und Blutgefäßen zu finden. Die hauptsächlichen Produzenten von S1P sind dabei Erythrozyten und Endothel-Zellen, wobei auch Thrombozyten einen geringen Anteil haben. Innerhalb des Gewebes wird S1P durch die Wirkung von S1P-Lyasen zügig abgebaut. Dadurch existiert ein steiler Gradient zwischen hohen S1P-Konzentration innerhalb der Gefäße und niedrigen S1P-Konzentrationen des Gewebes.[4] Der resultierende Konzentrationsgradient wird von verschiedenen Zellen zur Migration genutzt.[5]

Positive Regulation

S1P wird durch die Sphingosin-Kinasen (SK1/2) durch Phosphorylierung aus Sphingosin gebildet.[6] Ein Regulationsmechanismus ist die intrazelluläre Konzentration dieses Enzyms am vorausgehenden Ende ("leading edge") der migrierenden Zelle, die Plasmamembran wird durch ihr Phosphatidylserin erkannt. SK1 wird durch verschiedenste Wachstumsfaktoren und Hormone induziert.

Negative Regulation

Der Abbau von S1P erfolgt durch die S1P-Lyase (Coenzym: Pyridoxalphosphat) zu Hexadecanal und Phosphoethanolamin. Daneben sind auch verschiedene andere Lipidphosphatasen in der Lage S1P zu Sphingosin zu dephosphorylieren.

Dynamische Regulation in Marginalzonen B-Zellen

Die Milz besteht anatomisch aus 2 verschiedenen Bereichen: die rote und weiße Pulpa. Während in der roten Pulpa die Mauserung der Erythrozyten stattfindet, ist die weiße Pulpa das lymphatische Kompartiment. Sie ist aus T-Zone (periarterielle Lymphscheide; PALS) und B-Zone (Follikel) aufgebaut. Die Übergangszone zwischen Follikeln und roter Pulpa wird als Marginalzone bezeichnet. Zwischen Marginalzone und Follikeln ist der Marginalsinus lokalisiert. In der Marginalzone sind spezialisierte Marginalzonen B-Zellen (MZB) lokalisiert.[7] Nach Kontakt mit Substanzen die ein pathogen-associated molecular pattern (PAMP) oder damage-associated molecular pattern (DAMP) tragen, wandern diese MZB in den Follikel hinein. Dabei präsentieren sie den follikulären B-Zellen des Follikels die Antigene mit denen sie in Kontakt gekommen sind.[8] Einige Tage nach ihrer Einwanderung verlassen sie den Follikel wieder und sind dann erneut in der Marginalzone zu finden. Dieser Migrationsprozess wird über 2 verschiedene Substanzen reguliert. Die follikulären dendritischen Zellen (fDC) produzieren das Chemokin CXCL13.[9][10] In der Marginalzone ist auf Grund des hohen Blutanteils eine hohe S1P-Konzentration vorhanden. Im Ruhezustand exprimieren die MZB sowohl S1P1, S1P3 und CXCR5. Sowohl S1P1 wie auch S1P3 bewirken eine Wanderung der Zellen in Richtung der höchsten S1P-Konzentration, also in die Marginalzone.[11] Demgegenüber ist der Ligand von CXCR5 das Chemokin CXCL13, somit bewirkt eine Expression von CXCR5 eine Wanderung der Zellen in den Follikel hinein. Da die S1P-Rezeptoren eine höhere Priorität als der CXCR5-Rezeptor haben überschreiben sie dessen Wirkung. Das Resultat ist, dass die MZB in der Marginalzone verbleibt. Kommt die MZB nun aber in Kontakt mit einem PAMP oder DAMP (z. B. LPS) bewirkt dies den Abbau der S1P-Rezeptoren. Dadurch wird die CXCR5-CXCL13-Wirkung nicht mehr überschrieben und die MZB wandert in den Follikel hinein. Nach einigen Tagen erholt sich die S1PR-Expression und es ist wieder S1P1 und S1P3 an der Zelloberfläche zu finden. Dadurch wird die CXCR5-CXCL13-Wirkung erneut überschrieben und die Zellen wandern zur höchsten S1P-Konzentration, also zurück in die Marginalzone. Dieser Prozess wird als Oszillation der Marginalzonen-B-Zellen beschrieben.[12]

Ein vergleichbarer Prozess wird auch von konventionellen B-Zellen genutzt. Sie nutzen eine verstärkte CXCR5-Expression um in den Follikel einzuwandern.[13] Nachdem sie ihre follikuläre Reifung abgeschlossen haben verlassen sie die B-Zone durch vermehrte S1P1-Expression und erreichen die Marginalzone. Da sie aber weniger Integrine als MZB exprimieren können sie sich dort nicht niederlassen, sondern mit dem Blutfluss weggetragen, dadurch kehren sie in die Zirkulation zurück.[14][15][16] Dieser Prozess wird als Rezirkulation bezeichnet.

Rezeptoren

Signaltransduktion

S1P-Rezeptoren sind G-Proteine gekoppelte Rezeptoren und werden durch Ligandenbindung und Autophosphorylierung oder durch ligandenunabhängige Phosphorylierung durch andere Kinasen (z. B. akt/PI3K) aktiviert. Die Rezeptoren wurden zunächst EDG (endothelial differentiation gene), später S1PR (S1P-Rezeptoren) benannt. Die aktuelle Nomenklatur bezeichnet die 5 verschiedenen S1P-Rezeptoren als S1P1-5, wobei die entsprechenden Gene als S1PR1-5 bezeichnet sind.[17] Typische second messenger sind MAPK, PI3K, PLC/IP3/Calcium, Rho-Kinase.

S1P-Rezeptor Typ 1 (S1P1)

Der S1P-Rezeptor Typ 1 (S1P1) beeinflusst die Angiogenese und die Wanderung von Immunzellen durch den Körper.[18] Bei S1P1-Rezeptor Knockout-Mäusen ist die Angiogenese größerer Gefäße defekt, wobei das Verhalten der glatten Muskelzellen und Perizyten so verändert ist, dass sie sich nicht im notwendigen Ausmaß bilden. S1PR1-defiziente (s1pr1–/–) Embryonen versterben noch vor der Geburt auf Grund fehlerhafter Vaskularisierung. Defizienzen in anderen S1P-Rezeptoren sind lebensfähig und werden in wissenschaftlichen Studien zur Erforschung der S1P-Rezeptoren genutzt.

S1P-Rezeptor Typ 2 (S1P2)

S1P2 ist relevant für die Degranulation von Mastzellen, deren Histamin-Sekretion und die Kontraktion von glatten Muskelzellen in Bronchien.[19]

S1P-Rezeptor Typ 3 (S1P3)

Der Rezeptor S1P3 beeinflusst die Migration und Proliferation von verschiedenen Zellen. Außerdem wurde eine Rolle in Entzündungsprozessen, Krebserkrankungen und verschiedenen kardiovaskulären Erkrankungen beschrieben.[20]

S1P-Rezeptor Typ 4 (S1P4)

Die Expression von S1P4 ist wichtig für die regelrechte Bildung von Thrombozyten.[21] Außerdem wurde ein Einfluss auf peritoneale B-Zellen beschrieben.[22]

S1P-Rezeptor Typ 5 (S1P5)

Der S1P5-Rezeptor ist insbesondere auf den Oligodendrozyten des Nervensystems vorhanden und scheint einen Einfluss auf deren Überleben zu haben.[23]

Klinische Anwendung

Verschiedene Medikamente sind zugelassen, die auf einer Beeinflussung des S1P-Systems beruhen. Ihnen gemeinsam ist eine Wirkung über die S1P-Rezeptoren. Bisher sind keine Medikamente zugelassen, welche die Produktion oder den Abbau von S1P direkt beeinflussen. Das erste zugelassene Medikament war Fingolimod (FTY720), dessen Effekt insbesondere der Hemmung des S1P-Rezeptors Typ 1 (S1P1) zugeschrieben wurde. Auch die anderen zugelassenen Medikamente wirken primär über eine Hemmung von S1P1.[24] Im Körper verhindern diese Wirkstoffe eine Auswanderung von B-Zellen aus lymphatischen Organen in den Blutkreislauf. Bei einer Multiplen Sklerose entstehen auto-reaktive B-Zellen.[25] Das bedeutet, dass diese Immunzellen körpereigene Gewebe angreifen, statt Krankheitserreger zu bekämpfen. Im Falle der Multiplen Sklerose greifen die auto-reaktiven B-Zellen das Nervensystem an. Durch Einnahme von Fingolimod und ähnlichen Medikamenten werden die B-Zellen daran gehindert von ihrem Entstehungsorten auszuwandern und sind dadurch nicht mehr in der Lage das Nervensystem zu attackieren. Dies kann zu einer Besserung der Symptome von Patienten führen die unter Multipler Sklerose leiden.[26] Gleichzeitig sind aber auch alle anderen B-Zellen nicht mehr in der Lage in den Blutstrom einzuwandern. Ein typischer Befund ist daher ein Mangel von Immunzellen im Blut, eine sogenannte Lymphopenie.[27]

Überblick von zugelassenen Medikamenten zur Beeinflussung von S1P-Rezeptoren[28]
WirkstoffS1P1S1P2S1P3S1P4S1P5Indikation
Fingolimod (Gilenya; Hersteller: Novartis)+–+++Zulassung zur

Behandlung von Multipler Sklerose

Ozanimod (Zeposia; Hersteller: BMS)+–––+
Ponesimod (Ponvory; Hersteller: Janssen)+––––
Siponimod (Mayzent; Hersteller: Novartis)+––––

Etrasimod ist ein – noch experimenteller – einmal täglich oral einzunehmender Sphingosin-1-Phosphat-Rezeptor-Modulator, der u. a. in den Indikationen Atopische Dermatitis, Colitis ulcerosa, Eosinophile Ösophagitis und Morbus Crohn untersucht wird.[29]

Literatur

  • A. E. Alewijnse u. a.: Cardiovascular effects of sphingosine-1-phosphate and other sphingomyelin metabolites. In: Br J Pharmacol. Bd. 143, 2004, S. 666–684. PMID 15504747
  • K. A. Vora u. a.: Sphingosine 1-phosphate receptor agonist FTY720-phosphate causes marginal zone B cell displacement. In: J Leukoc Biol Bd. 78, 2005, S. 471–480. PMID 15894589
  • T. A. Taha u. a.: Sphingosine kinase: biochemical and cellular regulation and role in disease. In: J. Biochem. Mol. Biol. Bd. 39, 2006, S. 113–131. PMID 16584625 PDF – ausführlicher Review, der auf die SK zentriert, dabei jedoch die gesamte klinische Bedeutung beschreibt
  • S. Spiegel, S. Milstien: Sphingosine 1-phosphate, a key cell signaling molecule. In: J. Biol. Chem. Bd. 277, 2002, S. 25851–25854. PMID 12011102, doi:10.1074/jbc.R200007200
  • I. Girkontaite u. a.: The sphingosine-1-phosphate (S1P) lysophospholipid receptor S1P3 regulates MAdCAM-1+ endothelial cells in splenic marginal sinus organization. In: J Exp Med Bd. 200, 2004, S. 1491–1501. PMID 15583019
  • G. Cinamon u. a.: Sphingosine 1-phosphate receptor 1 promotes B cell localization in the splenic marginal zone. In: Nat Immunol Bd. 5, 2004, S. 713–720. PMID 15184895
  • T. Sanchez u. a.: Phosphorylation and action of the immunomodulator FTY720 inhibits vascular endothelial cell growth factor-induced vascular permeability. In: J Biol Chem. Bd. 278, 2003, S. 47281–47290. PMID 12954648
  • S. Pyne, N. J. Pyne: Sphingosine 1-phosphate signalling in mammalian cells. In: Biochem. J. Bd. 349, 2000, S. 385–402. PMID 10880336; PMC 1221160 (freier Volltext) – ausführlicher, aber schwer zu lesender alter Übersichtsartikel
  • S. H. Wei u. a.: Sphingosine 1-phosphate type 1 receptor agonism inhibits transendothelial migration of medullary T cells to lymphatic sinuses. In: Nat Immunol. Bd. 6, 2005, S. 1228–1235. PMID 16273098

Einzelnachweise

  1. ↑ a b c Datenblatt Sphingosine 1-phosphate, ≥ 95 %, powder bei Sigma-Aldrich, abgerufen am 31. Januar 2012 (PDF).
  2. ↑ Eintrag zu Sphingosin-1-phosphat. In: Römpp Online. Georg Thieme Verlag, abgerufen am 27. Januar 2012..
  3. ↑ Thudichum J.L.W.: A Treatise on the Chemical Constitution of Brain. Hrsg.: Bailliere, Tindall, and Cox. London 1884.
  4. ↑ T. Hla, K. Venkataraman, J. Michaud: The vascular S1P gradient-cellular sources and biological significance. In: Biochim. Biophys. Acta. Nr. 1781, 2008, S. 477–482, doi:10.1016/j.bbalip.2008.07.003, PMID 18674637.
  5. ↑ S. R. Schwab, J. P. Pereira, M. Matloubian, Y. Xu, Y. Huang, J. G. Cyster: Lymphocyte sequestration through S1P lyase inhibition and disruption of S1P gradients. In: Science. Nr. 309, 2005, S. 1735–1739, doi:10.1126/science.1113640, PMID 16151014.
  6. ↑ B. M. Buehrer, R. M. Bell: Sphingosine kinase: properties and cellular functions. In: Adv Lipid Res. Band 61, 1993, S. 59–67, PMID 8397478.
  7. ↑ G. Kraal: Cells in the marginal zone of the spleen. In: Int Rev Cytol. Band 132, 1992, S. 31–74, doi:10.1016/s0074-7696(08)62453-5, PMID 1555921.
  8. ↑ G. Cinamon, M. A. Zachariah, O. M. Lam, F. W. Foss Jr, J. G. Cyster: Follicular shuttling of marginal zone B cells facilitates antigen transport. In: Nat Immunol. Band 9, 2008, S. 54–62, doi:10.1038/ni1542, PMID 18037889.
  9. ↑ J. G. Cyster, K. M. Ansel, K. Reif, E. H. Ekland, P. L. Hyman, H. L. Tang, S. A. Luther, V. N. Ngo: Follicular stromal cells and lymphocyte homing to follicles. In: Immunol Rev. Band 176, 2000, S. 181–193, doi:10.1034/j.1600-065x.2000.00618.x, PMID 11043777.
  10. ↑ K. M. Ansel, V. N. Ngo, P. L. Hyman, S. A. Luther, R. Förster, J. D. Sedgwick, J. L. Browning, M. Lipp, J. G. Cyster: A chemokine-driven positive feedback loop organizes lymphoid follicles. In: Nature. Band 406, 2000, S. 309–314, doi:10.1038/35018581, PMID 10917533.
  11. ↑ G. Cinamon, M. Matloubian, MJ. Lesneski, Y. Xu, C. Low, T. Lu, R. L. Proia, J. G. Cyster: Sphingosine 1-phosphate receptor 1 promotes B cell localization in the splenic marginal zone. In: Nat Immunol. Band 5, 2004, S. 713–720, doi:10.1038/ni1083, PMID 15184895.
  12. ↑ T. I. Arnon, R. M. Horton, I. L. Grigorova, J. G. Cyster: Visualization of splenic marginal zone B-cell shuttling and follicular B-cell egress. In: Nature. Band 493, 2013, S. 684–688, doi:10.1038/nature11738, PMID 23263181.
  13. ↑ R. Förster, A. E. Mattis, E. Kremmer, E. Wolf, G. Brem, M. Lipp: A putative chemokine receptor, BLR1, directs B cell migration to defined lymphoid organs and specific anatomic compartments of the spleen. In: Cell. Band 87, 1996, S. 1037–1047, doi:10.1016/s0092-8674(00)81798-5, PMID 8978608.
  14. ↑ S. R. Schwab, J. G. Cyster: Finding a way out: lymphocyte egress from lymphoid organs. In: Nat Immunol. Band 8, 2007, S. 1295–1301, doi:10.1038/ni1545, PMID 18026082.
  15. ↑ T. T. Lu, J. G. Cyster: Integrin-mediated long-term B cell retention in the splenic marginal zone. In: Science. Band 297, 2002, S. 409–412, doi:10.1126/science.1071632, PMID 12130787.
  16. ↑ J. P. Pereira, L. M. Kelly, J. G. Cyster: Finding the right niche: B-cell migration in the early phases of T-dependent antibody responses. In: Int Immunol. Band 22, 2010, S. 413–419, doi:10.1093/intimm/dxq047, PMID 20508253.
  17. ↑ Y. Kihara, M. Maceyka, S. Spiegel, J. Chun: Lysophospholipid receptor nomenclature review: IUPHAR Review 8. In: Br J Pharmacol. 2014, S. 3575–3594, doi:10.1111/bph.12678, PMID 24602016.
  18. ↑ Catherine O’Sullivan, Kumlesh K. Dev: The structure and function of the S1P1 receptor. In: Trends in Pharmacological Sciences. Band 34, Nr. 7, Juli 2013, S. 401–412, doi:10.1016/j.tips.2013.05.002, PMID 23763867.
  19. ↑ Megan M. Price, Carole A. Oskeritzian, Sheldon Milstien, Sarah Spiegel: Sphingosine-1-phosphate synthesis and functions in mast cells. In: Future Lipidology. Band 3, Nr. 6, 1. Dezember 2008, S. 665–674, doi:10.2217/17460875.3.6.665, PMID 19802381, PMC 2749270 (freier Volltext).
  20. ↑ Xuehui Fan, Lili Liu, Yue Shi, Fanghan Guo, Xiao He: Recent advances of the function of sphingosine 1-phosphate (S1P) receptor S1P3. In: Journal of Cellular Physiology. Band 236, Nr. 3, März 2021, S. 1564–1578, doi:10.1002/jcp.29958, PMID 33410533.
  21. ↑ S. Golfier, S. Kondo, T. Schulze u. a.: Shaping of terminal megakaryocyte differentiation and proplatelet development by sphingosine-1-phosphate receptor S1P4. In: J. FASEB. Nr. 24, 2010, S. 4701–4710, doi:10.1096/fj.09-141473, PMID 20686109.
  22. ↑ Annabel Kleinwort, Felix Lührs, Claus-Dieter Heidecke, Martin Lipp, Tobias Schulze: S1P Signalling Differentially Affects Migration of Peritoneal B Cell Populations In Vitro and Influences the Production of Intestinal IgA In Vivo. In: International Journal of Molecular Sciences. Band 19, Nr. 2, 29. Januar 2018, S. E391, doi:10.3390/ijms19020391, PMID 29382132, PMC 5855613 (freier Volltext).
  23. ↑ C. Jaillard, S. Harrison, B. Stankoff, M. S. Aigrot, A. R. Calver: Edg8/S1P5: an oligodendroglial receptor with dual function on process retraction and cell survival. In: The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. Band 25, Nr. 6, 9. Februar 2005, S. 1459–1469, doi:10.1523/JNEUROSCI.4645-04.2005, PMID 15703400, PMC 6726002 (freier Volltext).
  24. ↑ Daniel Ontaneda, Jeffrey A. Cohen: Potential mechanisms of efficacy and adverse effects in the use of fingolimod (FTY720). In: Expert Review of Clinical Pharmacology. Band 4, Nr. 5, September 2011, S. 567–570, doi:10.1586/ecp.11.46, PMID 22114884.
  25. ↑ J. B. Sun, T. Olsson, W. Z. Wang, B. G. Xiao, V. Kostulas: Autoreactive T and B cells responding to myelin proteolipid protein in multiple sclerosis and controls. In: European Journal of Immunology. Band 21, Nr. 6, Juni 1991, S. 1461–1468, doi:10.1002/eji.1830210620, PMID 1710567.
  26. ↑ Ludwig Kappos, Jack Antel, Giancarlo Comi, Xavier Montalban, Paul O’Connor: Oral fingolimod (FTY720) for relapsing multiple sclerosis. In: The New England Journal of Medicine. Band 355, Nr. 11, 14. September 2006, S. 1124–1140, doi:10.1056/NEJMoa052643, PMID 16971719.
  27. ↑ Sara Nagy, Jens Kuhle, Tobias Derfuss: Lymphocyte recovery after fingolimod discontinuation in patients with MS. In: Neurology(R) Neuroimmunology & Neuroinflammation. Band 7, Nr. 6, November 2020, S. e874, doi:10.1212/NXI.0000000000000874, PMID 32801166, PMC 7641093 (freier Volltext).
  28. ↑ Marisa P McGinley, Jeffrey A Cohen: Sphingosine 1-phosphate receptor modulators in multiple sclerosis and other conditions. In: The Lancet. Band 398, Nr. 10306, September 2021, S. 1184–1194, doi:10.1016/S0140-6736(21)00244-0 (elsevier.com [abgerufen am 13. März 2022]).
  29. ↑ Arena Pharmaceuticals kündigt erste Versuchsperson an, die in der globalen Phase-3-Studie ELEVATE UC 12 zur Evaluierung von Etrasimod bei ulzerativer Colitis dosiert wurde, PM Arena Pharmaceuticals vom 16. September 2022, abgerufen am 26. Mai 2022

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Chemical structure of Sphingosine-1-phosphate, a lysophospholipid and lipid signalling molecule.